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金牌会员第7
如何绘制大鼠Col-Ⅰ浓度的标准曲线
2026.07.21   点击16次

绘制大鼠胶原蛋白I型(Col-Ⅰ)ELISA标准曲线是定量检测样本浓度的核心步骤,需严格遵循试剂盒说明书规范,以下是详细操作流程及关键注意事项:


一、标准曲线绘制全流程

步骤1:标准品梯度稀释(建立浓度梯度)

操作:取试剂盒附带的Col-Ⅰ标准品原液(通常为高浓度储备液,如40 ng/mL),用试剂盒配套的标准品稀释液按说明书要求梯度稀释,形成覆盖检测范围的浓度梯度(如1.25、2.5、5、10、20、40 ng/mL,共6个浓度点)。

复孔设置:每个浓度点设2个复孔(减少加样误差,提高数据可靠性),空白孔(0 ng/mL,仅加标准品稀释液)设1个或2个复孔。

示例:若说明书要求“1:2稀释”,则取50μl标准品原液+50μl稀释液,混匀后取50μl加入下一管,重复至目标浓度(如40→20→10→5→2.5→1.25 ng/mL)。

步骤2:加样与温育(抗原-抗体结合)

加样:向ELISA微孔板各孔加入50μl标准品(或样本),确保加样量准确(使用校准加样器,误差≤2%),避免气泡产生。

温育:将微孔板置于37℃温育箱中,孵育30分钟(部分试剂盒要求室温2小时,需以说明书为准),期间避免震动微孔板,防止抗原-抗体复合物解离。

步骤3:洗涤(去除未结合物质)

洗涤次数:重复5-6次,每次每孔加入300-500μl洗涤液,静置30秒后倒去废液,最后一次洗涤后用吸水纸拍干孔底(避免残留水分影响显色)。

手动洗板技巧:倾斜微孔板,沿孔壁缓慢加入洗涤液,避免冲击孔底;倒废液时,将板倾斜45°,利用重力排空液体。

步骤4:加酶标二抗与显色(酶促反应)

加酶标二抗:每孔加入50μl HRP标记的检测抗体(工作浓度按说明书,通常为1:1000稀释),37℃温育30分钟。

显色:洗涤后,每孔加入50μl TMB底物液,37℃避光温育10-15分钟(时间需严格控制,过长会导致显色过深,过短则OD值偏低)。

步骤5:终止反应与OD值测定

终止反应:每孔加入50μl终止液(2M硫酸或盐酸),蓝-黄色反应立即终止(颜色由蓝转黄)。

OD值测定:用酶标仪在450nm波长下读取各孔OD值(参考波长630nm,扣除背景值)。

步骤6:标准曲线拟合与浓度计算

数据整理:以标准品浓度为横坐标(X轴,对数刻度),OD值为纵坐标(Y轴,线性刻度),绘制散点图。

曲线拟合:推荐使用4参数逻辑斯蒂模型(4PL)或非线性回归拟合(如GraphPad Prism、Excel的“趋势线”功能),得到标准曲线方程(如 Y= 

1+(X/C) BA−D+D ,其中A=最大OD值,D=最小OD值,B=斜率,C=EC50)。

浓度计算:将样本OD值代入方程,反推Col-Ⅰ浓度(若样本经稀释,需乘以总稀释倍数)。

二、关键注意事项

标准品稀释精度:  


使用校准加样器(误差≤2%),避免标准品浓度偏差(如稀释液体积误差>5%,会导致标准曲线线性差,R²<0.9)。

标准品原液需充分混匀(涡旋振荡10秒),避免局部浓度不均。

复孔与空白孔设置:  


标准品复孔OD值差异应<10%(如20 ng/mL复孔OD值为1.2和1.25,差异4.2%),若差异过大需重做实验。

空白孔OD值应<0.1(扣除背景值),若>0.1需检查洗涤是否彻底、试剂是否过期。

曲线线性要求:  


标准曲线R²值应≥0.98(非线性拟合),若R²<0.98,需排查标准品稀释错误、加样量不准、温育温度波动等问题。

若样本OD值超出标准曲线范围(如>40 ng/mL),需稀释样本后重测,计算时乘以总稀释倍数。

试剂与样本兼容性:  


标准品稀释液需与试剂盒配套使用(不同品牌/批次的稀释液可能影响抗体结合效率)。

样本需与标准品在同一块微孔板中检测,避免批次间差异(如不同批次的酶标二抗活性波动)。


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